Макроскопические и сонографические корреляции в оценке регенерации ожогового повреждения кожи морских свинок под действием секретома мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток

Авторы

  • А.А. Усачева Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина, Москва, Россия https://orcid.org/0000-0001-9460-3491
  • Е.Н. Борхунова Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина имени К.И. Скрябина, Москва, Россия https://orcid.org/0000-0003-2355-8616
  • М.А. Кузнецова Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина имени К.И. Скрябина, Москва, Россия https://orcid.org/0000-0002-2031-1290
  • А.И. Довгий ООО «Т-Хелпер КТ», Москва, Россия

DOI:

https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-69-81

Ключевые слова:

кожа, УЗИ, секретом ММСК, термические ожоги кожи животных, регенерация

Аннотация

Введение. Термические ожоги кожи у сельскохозяйственных животных являются частой травмой, приводящей к выбраковке животных, снижению продуктивности и значительному экономическому ущербу. Существующие методы лечения в ветеринарной практике часто недостаточно эффективны из-за медленного очищения ран, инфицирования и грубого рубцевания. Стимуляция репарации для улучшения результатов лечения возможна с помощью препаратов-регенерантов, в частности, секретома мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК), который содержит комплекс цитокинов про- и противовоспалительного действия.
Цель. Оценить влияние секретома ММСК на репарацию кожи животных после термического ожога III степени.  
Материалы и методы. Исследование проведено на 60 морских свинках, которым на коже бедра моделировали термический ожог III степени и распределяли на контрольную (физиологический раствор, n = 20), опытную (секретом ММСК, n = 20) группы и группу сравнения (мазь на основе декспантенола, n = 20). Исследования проводили на 7-е, 30-е и 60-е сутки, используя комплексный методический подход, включающий клинический осмотр, ультрасонографические и гистологические исследования.
Результаты. Доказано, что секретом ММСК на ранних стадиях (7-е сутки) стимулирует макрофагальную резорбцию детрита, а также неоангиогенез, формирование грануляционной ткани и эпителизацию. К 30-м суткам эксперимента в опытной группе выявили более раннее, по сравнению с другими группами, созревание фиброзной ткани и появление признаков органотипии в периферических частях регенерата. На 60-е сутки рубцовые изменения кожи были минимальны по сравнению с контролем и группой сравнения, при этом центральная, меньшая по площади, часть регенерата была представлена нормотрофическим рубцом с признаками ремоделирования, а периферическая имела органотипическое строение.
Заключение. Применение секретома ММСК стимулирует репаративную регенерацию кожи после термического ожога за счет быстрой резорбции детрита, активизации роста грануляций, созревания и ремоделирования рубцовой ткани с выраженной тенденцией к формированию органотипического регенерата. Полученные данные обосновывают целесообразность дальнейших исследований на сельскохозяйственных животных и разработку ветеринарных препаратов на основе секретома.

Для цитирования: Усачева А.А., Борхунова Е.Н., Кузнецова М.А., Довгий А.И. Макроскопические и сонографические корреляции в оценке регенерации ожогового повреждения кожи морских свинок под действием секретома мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток. Аграрный вестник Северного Кавказа. 2026;16(1):69-81. https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-69-81 EDN ATLCXC

To cite: Usacheva A.A., Borkhunova E.N., Kuznetsova M.A., Dovgii A.I. Macroscopic and sonographic correlations in the assessment of burn injury regeneration in guinea pig skin under the influence of the secretome of multipotent mesenchymal stromal cells. Agrarian Bulletin of the North Caucasus. 2026;16(1):69-81. (In Russ.) https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-69-81 

Библиографические ссылки

Chmielowiec-Korzeniowska A., Nowakowicz-Dębek B., Bis-Wencel H., et al. Safety of animals on livestock farms during a fire emergency. Animal Science and Genetics. 2025;21(1):1–9. https://doi.org/10.5604/01.3001.0055.0463

Bolcato M., Rocarro M., Gentile A., et al. First report on medical treatment and outcome of burnt cattle. Veterinary Sciences. 2023;10(3):187. https://doi.org/10.3390/vetsci10030187

Chigerwe M., Depenbrock S.M., Heller M.C., et al. Clinical management and outcomes for goats, sheep, and pigs hospitalized for treatment of burn injuries sustained in wildfires: 28 Cases (2006, 2015, and 2018). Journal of the American Veterinary Medical Association. 2020;257(11):1165–1170. https://doi.org/10.2460/javma.257.11.1165

Zinoviev E.V., Soloshenko V.V., Kostyakov D.V. et al. Prediction of the outcome of skin grafting based on microcirculation parameters in a burn wound. Russian Sklifosovsky Journal of Emergency Medical Care. 2022;11(3):412-418. (In Russ.) https://doi.org/10.23934/2223-9022-2022-11-3-412-418

Shtykhno Y.M., Udovichenko V.I. Comparative study of intravital microcirculation and blood rheology in rats after burns of different degrees of severity. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 1979;88:984–986. https://doi.org/10.1007/BF00799260

Vizoso F.J., Eiro N., Cid S. et al. Mesenchymal stem cell secretome: Toward cell free therapeutic strategies in regenerative medicine. International Journal of Molecular Sciences. 2017;18(9):1852. https://doi.org/10.3390/ijms18091852

Fedorova A.O., Aistova L.G., Miller T.V. et al. Pathomorphological characteristics of burn disease in rabbits under non-invasive electromagnetic therapy. Bulletin of KrasSAU. 2025;(9(222)):215-228. (In Russ.) https://doi.org/10.36718/1819-4036-2025-9-215-228

Kuznetsova M.A., Borkhunova E.N., Stepanishin V.V., Pozyabin S.V. Possibilities of using MMSC secretome to stimulate osteoreparation: an experimental study. Veterinaria i Kormlenie. 2025;(1):48-53. (In Russ.) https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2025-1-10

Saroyan S.V., Komarov S.V. Evaluation of the effectiveness of using mesenchymal stem cell secretome in the postoperative therapy of corneal sequestrum. Systematization of clinical experience. Scientific Notes of the Kazan Bauman State Academy of Veterinary Medicine. 2021;(4):196–203. (In Russ.) https://doi.org/10.31588/2413-4201-1883-248-4-196-203

Kangari P., Talaei-Khozani T., Razeghian Jahromi I. et al. Mesenchymal stem cells: amazing remedies for bone and cartilage defects. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11(1):492. https://doi.org/10.1186/s13287-020-02001-1

L P.K., Kandoi S., Misra R. et al. The mesenchymal stem cell secretome: A new paradigm towards cell-free therapeutic mode in regenerative medicine. Cytokine & Growth Factor Reviews. 2019;46:1–9. https://doi.org/10.1016/j.cytogfr.2019.04.002

Kachalin M.D., Borkhunova E.N., Pozyabin S.V. et al. Reparative regeneration of tendon under the influence of the secretome of multipotent mesenchymal stromal cells: an experimental study. Clinical and Experimental Morphology. 2023;12(2):77–88. (In Russ.) https://doi.org/10.31088/CEM2023.12.2.77-88

Maiborodin I.V., Shevela A.I., Morozov V.V. et al. Influence of extracellular vesicles (exosomes) of mesenchymal stromal cells on bone tissue regeneration. Novosti Khirurgii. 2019;(2). (In Russ.) https://doi.org/10.18484/2305-0047.2019.2.196

Lee K.C., Dretzke J., Grover L., Logan A., Moiemen N. A systematic review of objective burn scar measurements. Burns & Trauma. 2016;4:14. https://doi.org/10.1186/s41038-016-0036-x

Seidenari S., Giusti G., Bertoni L., Magnoni C., Pellacani G. Thickness and echogenicity of the skin in children as assessed by 20-MHz ultrasound. Dermatology. 2000;201(3):218–222. https://doi.org/10.1159/000018491

Wang X-Q., Mill J., Kravchuk O., Kimble R.M. Ultrasound assessed thickness of burn scars in association with laser Doppler imaging determined depth of burns in paediatric patients. Burns. 2010;36(8):1254–1262. https://doi.org/10.1016/j.burns.2010.05.01

Lau J.C., Li-Tsang C.W., Zheng Y.P. Application of tissue ultrasound palpation system (TUPS) in objective scar evaluation. Burns. 2005;31(4):445–452. https://doi.org/10.1016/j.burns.2004.07.016

Hambleton J., Shakespeare P.G., Pratt B.J. The progress of hypertrophic scars monitored by ultrasound measurements of thickness. Burns. 1992;18(4):301–307. https://doi.org/10.1016/0305-4179(92)90151-j

Simons M., Kee E.G., Kimble R., Tyack Z. Ultrasound is a reproducible and valid tool for measuring scar height in children with burn scars: a cross-sectional study of the psychometric properties and utility of the ultrasound and 3D camera. Burns. 2017;43(5):993–1001. https://doi.org/10.1016/j.burns.2017.01.034

Sokolov A.A., Kolesnikova A.I., Dovgiy A.I. et al. Patent № 2708329 C2, Russian Federation. Stem cell material, compositions and methods of use. № 2016121458: filed on 31.05.2016 published on 11.01.2024, applicant T-Helper cell technologies (In Russ.)

Singer A.J., McClain S.A. A porcine burn model. In: DiPietro L.A., Burns A.L., editors. Methods in Molecular Medicine, Vol. 78: Wound Healing: Methods and Protocols. Totowa, New Jersey: Humana Press Inc.; 2003. p. 107-119. https://doi.org/10.1385/1-59259-332-1:107

Загрузки

Как цитировать

Усачева, А., Борхунова, Е., Кузнецова, М., & Довгий, А. (2026). Макроскопические и сонографические корреляции в оценке регенерации ожогового повреждения кожи морских свинок под действием секретома мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток. Аграрный вестник Северного Кавказа, 16(1), 69–81. https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-69-81

Выпуск

Раздел

Животноводство и ветеринария