Влияние подкислителей на микробиоту кишечника и зоотехнические показатели при выращивании свиней на откорме
DOI:
https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-27-40Ключевые слова:
микробиота кишечника, свиньи, откорм, подкислителиАннотация
Введение. В настоящее время поиск технологий, способных увеличить сохранность, продуктивность, иммунитет поголовья и воспрепятствовать развитию резистентности микробиоты к антибиотикам, является приоритетным в свиноводстве. Основными современными средствами профилактики являются антибиотики, которые, вызывая гибель нормофлоры и развитие дисбиозов, способствуют распространению резистентности, в связи с чем представляют угрозу для здоровья человека. Для решения обозначенной проблемы широкую перспективу имеют подкислители, воздействующие на микробиоту кишечника, метаболизм и продуктивные качества животных.
Цель. Изучить влияние подкислителей на микробиоту кишечника и зоотехнические показатели при выращивании свиней на откорме.
Материалы и методы. Объектом исследований служили свиньи на откорме, в рацион которых в возрасте 78 суток вводили подкислители. Эксперимент проводили на базе комплекса АО «Свинокомплекс «Приозерный» (Ленинградская область, Россия). Для проведения эксперимента формировали 3 группы животных-аналогов: контрольная группа с применением стандартного рациона, опытная группа 1 с применением нового подкислителя МетаБак, опытная группа 2 с применением подкислителя Продактив Ацид SE. Эксперимент длился в течение трех недель, после чего проводили отбор содержимого кишечника животных для исследования микробиоты кишечника с применением метода NGS-секвенирования. По окончании периода откорма оценивали зоотехнические показатели, включая живую массу, сохранность и конверсию корма.
Результаты. Установлено позитивное влияние применения обоих подкислителей на исследуемые показатели. Наилучшие результаты по сохранности и приросту живой массы достигнуты при использовании в рационах подкислителя нового МетаБак: показатель среднесуточного прироста составил 953 г (+4,27 %), сохранность - 99,07 %. Применение обоих препаратов способствовало нормализации микробиоты кишечника - повышению содержания микроорганизмов, связанных с метаболическими свойствами. Наименьшее содержание условно-патогенных и нежелательных бактерий выявлено в результате использования нового подкислителя МетаБак, на фоне которого происходило снижение количества микроорганизмов семейств Burkholderiales в 2,25, Campylobacterales в 1,4 раза, Mycoplasma – до полного вытеснения из микробного сообщества кишечника.
Заключение. На основании результатов эксперимента можно заключить, что исследуемые подкислители в рационах свиней на откорме нормализуют микробиоту кишечника и улучшают зоотехнические показатели выращивания.
Для цитирования: Скляров С.П., Крылов Р.А., Ильина Л.А., Савенков К.С., Пономарева Е.С., Заикин В.А., Лаптев Г.Ю. Влияние подкислителей на микробиоту кишечника и зоотехнические показатели при выращивании свиней на откорме. Аграрный вестник Северного Кавказа. 2026;16(1):27-40. https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-27-40 EDN HGQWXT
To cite: Sklyarov S.P., Krylov R.A., Ilina L.A., Savenkov K.S., Ponomareva E.S., Zaikin V.A., Laptev G.Y. Impact of acidifiers on the intestinal microbiota and zootechnical indicators in growing fattening pigs. Agrarian Bulletin of the North Caucasus. 2026;16(1):27-40. (In Russ.) https://doi.org/10.31279/2949-4796-2026-16-1-27-40
Библиографические ссылки
Korolev A.V. "Bio-Halkvinol" instead of feed antibiotics. Pigbreeding. 2018;1:21-23. (In Russ.).
Kalyuga V.V., Trifanov A.V., Bazykin V.I. Justification of a five-phase stress-free method of keeping pigs on small farms. Pigbreeding. 2018; 8:17-20. (In Russ.).
Quan. J., Wu Z., Ye Y. et al. Metagenomic Characterization of Intestinal Regions in Pigs With Contrasting Feed Efficiency. Frontiers in microbiology. 2020;11:32. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00032
Liu. Y., Espinosa C.D., Abelilla J.J., et al. Non-antibiotic feed additives in diets for pigs: A review. Animal Nutrition. 2018;4:113–125. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2018.01.007
Cromwell. G.L. Why and how antibiotics are used in swine production. Animal Biotechnology. 2002;13:7–27. https://doi.org/10.1081/ABIO-120005767
Han. Y.S., Tang C.H., Zhao Q.Y., et al. Effects of dietary supplementation with combinations of organic and medium chain fatty acids as replacements for chlortetracycline on growth performance, serum immunity, and faecal microbiota of weaned piglets. Livestock Science. 2018;216:210–218. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2018.08.013
Kuppusamy S., Kakarlab D., Venkateswarluc K., et al. Agriculture, Ecosystems and Environment Veterinary antibiotics (VAs) contamination as a global agro-ecological issue: A critical view. Agriculture Ecosystems & Environment. 2018;257:47–59. https://doi.org/10.1016/j.agee.2018.01.026
Long S.F., Xu Y.T., Pan L., et al. Mixed organic acids as antibiotic substitutes improve performance, serum immunity, intestinal morphology and microbiota for weaned piglets. Animal Feed Science and Technology. 2018;235:23–32. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2017.08.018
Holman D.B., Kommadath A., Tingley J.P., Abbott D.W. Novel Insights into the Pig Gut Microbiome Using Metagenome-Assembled Genomes. Microbiology Spectrum. 2022;10(4):e0238022. https://doi.org/10.1128/spectrum.02380-22
Yi. L., Cheng. W., Song. G., et al. Integrating Machine Learning to Identify Key Microbiota of Gut Community Changes Across Different Stages in Dahe Black Pigs. Microorganisms. 2025;13(9):2038. https://doi.org/10.3390/microorganisms13092038
Koloskova E.M., Ostrenko K.S., Ezersky V.A., et al. Study of the scar microbiome in sheep using molecular genetic methods (review). Problems of biology of productive animals. 2020;4:5-26. https://doi.org/10.25687/1996-6733
Söllinger A., Tveit A.T., Poulsen M., et al. Holistic assessment of rumen microbiome dynamics through quantitative metatranscriptomics reveals multifunctional redundancy during key steps of anaerobic feed degradation. Msystems. 2018;3:e00038-18. https://doi.org/10.1128/mSystems.00038-18
Wu I.W., Lee C.C., Hsu H.J., et al. Compositional and functional adaptations of intestinal microbiota and related metabolites in CKD patients receiving dietary protein restriction. Nutrients. 2020;12:nu12092799. https://doi.org/10.3390/nu12092799
Chen L., Shen Y., Wang C., et al. Megasphaera elsdenii lactate degradation pattern shifts in rumen acidosis models. Frontiers in Microbiology. 2019;10:162. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00162
Cabral L. d. S., Weimer P. J. Megasphaera elsdenii: Its Role in Ruminant Nutrition and Its Potential Industrial Application for Organic Acid Biosynthesis. Microorganisms. 2024;12(1):219. https://doi.org/10.3390/microorganisms12010219
Rhouma M., Braley C., Thériault W., et al. Evolution of Pig Fecal Microbiota Composition and Diversity in Response to Enterotoxigenic Escherichia coli Infection and Colistin Treatment in Weaned Piglets. Microorganisms. 2021;9(7):1459. https://doi.org/10.3390/microorganisms9071459
Rodrigues L.M., Neto T.O.D.A.L., Garbossa C.A.P., et al. Benzoic acid combined with essential oils can be an alternative to the use of antibiotic growth promoters for piglets challenged with E. coli F4. Animals. 2020;10:1978. https://doi.org/10.3390/ani10111978
Montoya D., D’angelo M., Martín-Orúe S.M., Rodríguez-Sorrento, A., et al. Effectiveness of two plant-based in-feed additives against an Escherichia coli F4 oral challenge in weaned piglets. Animals. 2021;11:2024. https://doi.org/10.3390/ani11072024
Samanta A.K., Gali J.M., Dutta T.K., et al. Effect of dietary phytobiotic mixture on growth performance, nutrient utilization, and immunity in weaned piglets. Tropical animal health and production. 2021;53:459. https://doi.org/10.1007/s11250-021-02910-0
More G., Lall N., Hussein A., Tshikalange T.E. Antimicrobial constituents of Artemisia afra Jacq. ex Willd. against periodontal pathogens. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2012;252758. https://doi.org/10.1155/2012/252758
Moyo P., Kunyane P., Selepe M.A., et al. Bioassay-Guided Isolation and Identification of Gametocytocidal Compounds from Artemisia afra (Asteraceae). Malaria Journal. 2019;18:65. https://doi.org/10.1186/s12936-019-2694-1
Tariq S., Wani S., Rasool W., et al. A comprehensive review of the antibacterial, antifungal and antiviral potential of essential oils and their chemical constituents against drug-resistant microbial pathogens. Microbial Pathogenesis. 2019;134:103580. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2019.103580
Betancour-Murillo C.L., Aguilar-Marin S.B., Jovel J. Prevotella: A key player in ruminal metabolism. Microorganisms. 2022;11:1. https://doi.org/10.3390/microorganisms11010001
Lückstädt C., Wylie L., Remmer R., et al. Organic Acids in Animal Nutrition, Anitox: Lawrenceville, GA, USA, 2014.
Mounir M., Ibijbijen A., Farih K., et al. Their Antioxidant Properties, Mechanisms, and Benefits on Human and Animal Health: A Narrative Review. Biomolecules. 2022;12: 1443. https://doi.org/10.3390/biom12101443
Grilli E., Messina M.R., Tedeschi M., Piva A. Feeding a microencapsulated blend of organic acids and nature identical compounds to weaning pigs improved growth performance and intestinal metabolism. Livestock Science. 2010;133:173–175. https://doi.org/10.5187/jast.2021.e16
Ahmed S.T., Hwang J.A., Hoon J., et al. Comparison of Single and Blend Acidifiers as Alternative to Antibiotics on Growth Performance, Faecal Microflora, and Humoral Immunity in Weaned Piglets. Asian-Australas. Journal of Animal Science. 2014;27:93–100. https://doi.org/10.5713/ajas.2013.13411
De Lange C.F.M., Pluske J., Gong J., Nyachoti C.M. Strategic use of feed ingrédients and feed additives to stimulate gut health and development in young pigs. Livestock Science. 2010;134:124–134. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2010.06.117
Papatsiros V.G., Christodoulopoulos G., Filippopoulos L.C. The use of organic acids in monogastric animals (swine and rabbits). Journal of Cell and Animal Biology. 2012;6:154–159. https://doi.org/10.5897/JCAB11.081
Li S., Zheng J., Deng K., et al. Supplementation with organic acids showing different effects on growth performance, gut morphology, and microbiota of weaned pigs fed with highly or less digestible diets. Journal of Animal Science. 2018;96:3302–3318. https://doi.org/10.1093/jas/sky197
Fernandes A., Jobby R. Bacteriocins from lactic acid bacteria and their potential clinical applications. Applied Biochemistry and Biotechnology. 2022;194:4377–4399. https://doi.org/10.1007/s12010-022-03870-3
Tang H.W., Phapugrangkul P., Fauzi H.M., Tan J.S. Lactic Acid Bacteria Bacteriocin, an Antimicrobial Peptide Effective Against Multidrug Resistance: A Comprehensive Review. International Journal of Peptide Research and Therapeutics. 2021;28:14. https://doi.org/10.3390/ijms26094124
Umair M., Jabbar S., Zhaoxin L., et al. Probiotic-Based Bacteriocin: Immunity Supplementation Against Viruses. An Updated Review. Frontiers in Microbiology. 2022;13: 876058. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.876058
Liu X., Qian M., Shen Y., et al. An high-through put sequencing approach to the preliminary analysis of bacterial communities associated with changes in amino acid nitrogen, organic acid and reducing sugar contents during soy sauce fermentation. Food Chemistry. 2021,349:129131. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.129131
Tugnoli B., Giovagnoni G., Piva A., Grilli E. From acidifiers to intestinal health enhancer: How organic acids can improve growth efficiency of pigs. Animals. 2020,10:134. https://doi.org/10.3390/ani10010134
Soler C., Goossens T., Bermejo A., et al. Digestive microbiota is different in pigs receiving antimicrobials or a feed additive during the nursery period. PLoS ONE. 2018,13:e0197353. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0197353
Franz C., Baser K.H.C., Windisch W. Essential oils and aromatic plants in animal feeding—A European perspective. A review. Flavour and Fragrance Journal. 2010,25:327–340. https://doi.org/10.1002/ffj.1967
Lee J., Kim J.W., Hall H., Nyachoti C.M. Effect of dietary organic acids supplementation on growth performance, nutrient digestibility, and gut morphology in weaned pigs. Canadian Journal of Animal Science. 2021,102:255–265. https://doi.org/10.1139/CJAS-2021-0080
Huang Y., Yoo J.S., Kim H.J., et al. Effects of Dietary Supplementation with Blended Essential Oils on Growth Performance, Nutrient Digestibility, Blood Profiles and Fecal Characteristics in Weanling Pigs. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. 2010,23:607–613. https://doi.org/10.5713/ajas.2010.80120
Wang J.P., Lee J.H., Yoo J.S., et al. Effects of phenyllactic acid on growth performance, intestinal microbiota, relative organ weight, blood characteristics, and meat quality of broiler chicks. Poultry Science. 2010,89:1549–1555. https://doi.org/10.3382/ps.2009-00235
Khan S.H., Iqbal J. Recent advances in the role of organic acids in poultry nutrition. Journal of Applied Animal Research. 2016,44:359–369. https://doi.org/10.1080/09712119.2015.1079527
Duarte M.E., Kim S.W. Phytobiotics from Oregano Extracts Enhance the Intestinal Health and Growth Performance of Pigs. Antioxidants. 2022;11:2066. https://doi.org/10.3390/antiox11102066
Загрузки
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2026 С.П. Скляров, Р.А. Крылов, Л.А. Ильина, К.С. Савенков, Е.С. Пономарева, В.А. Заикин, Г.Ю. Лаптев
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
