Выявление патоморфологических особенностей диэпителизированных структур плаценты свиней

Авторы

DOI:

https://doi.org/10.31279/2949-4796-2025-15-1-5-15

Ключевые слова:

диэпителизированные структуры плаценты, внутриутробный период развития, плацентарная недостаточность, свиноматки, плацентарный барьер

Загрузки

270 500

Аннотация

Введение. В статье описано исследование по выявлению особенности строения диэпителизированных структур в плаценте свиней. Системное проведение гистологических исследований плацент у беременных животных позволило выявить новые методы оценки состояния беременных животных с учётом эмбриональных периодов развития плода, обосновать критические периоды развития новорождённого и выдвинуть научное положение о сохранении ритма родовой деятельности животных, а также вскрыть некоторые вопросы неонатального развития новорожденного потомства.
Методы. Для обзорной микроскопии и измерений изменений толщины плаценты использовался окуляр-микрометр Leica DM 2500. Гистологические срезы формировались с применением микротома Microm HM 340E и окрашивались по методу Маллори. Цитокиновый профиль, включая IL-1β, IL-2, IL-4, IL-10, TNF-α и IFN-γ, определялся методом иммуноферментного анализа с учетом результатов на спектрофотометре «Униплан-ТМ». Также в исследовании изучены комплексные свиные рекомбинантные цитокины I типа - альфа и II типа - гамма, а также смесь альфа- и гамма-интерферонов.
Результаты. При исследовании плацент свиноматок определены явные различия в структуре строения эпителиального слоя. Установлены очаги диэпителизации основных ворсин хориона. По признакам различия определены две группы свиноматок. Основным критерием соотнесения животных по интактным группам стало выявление диэпителизированных структур в плаценте свиней. В первую группу определены особи с выраженными диэпителизированными структурами плацентарной ткани, а вторая выступала контролем – без явных изменений эпителиохориального слоя.
Заключение. Использование установленных изменений фетоплацентарного комплекса (наличие диэпителизированных структур) на основании принципов гистоморфометрического анализа плаценты у животных может выступать основным направлением при изучении патогенеза ряда заболеваний и позволит формировать группы наиболее устойчивых особей.

Библиографические ссылки

Shakhov A.G., Sashnina L.Yu., Nikonenko G.V., Vladimirova Yu.Yu., Lazutina K.V. Cellular immunity in sows in various physiological periods in a norm and in case of postpartum pathology. International Journal of Veterinary Medicine. 2022;(4):326-332. https://doi.org/10.52419/ISSN2072-2419.2022.4.326

Pereyadkina S.P., Kocharyan V.D., Rodin P.V., Avdeenko V.S. Cattle placenta angiogenesis at pregnant gestosis. Izvestiâ Nižnevolžskogo agrouniversitetskogo kompleksa. 2016;2(42):170-176.

Khvorostukhina N.F., Stepanova N.N., Novichkov D.A., Mikhailova J.V., Trushina O.V., Odnokozova O.S., Kirillova N.A. Pregnancy, childbirth and perinatal outcomes in isthmic-cervical insufficiency, depending on the method of delivery. Medical Council. 2022;(5):86-94. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2022-16-5-86-94

Krishtoforova B.V., Sayenko N.V. Pharmacological aspects and viability of newborn animals: a monograph. St. Petersburg: Publishing house "Lan"; 2018. 404 p.

Drozdova L.I., Lazareva A.A. Comparative analysis of morphological changes in the placenta of sows with normal and pathological pregnancy. Agrarian Bulletin of the Urals. 2016;10(152):15-19.

Pinegin B.V., Pashenkov M.V., Pinegin V.B., Khaitov R.M. Mucosal epithelial cells and novel approaches to immunoprophylaxy and immunotherapy of infectious diseases. Immunology. 2020;41(6):486-500. https://doi.org/10.33029/0206-4952-2020-41-6-486-500

Baymishev H.B., Krishtoforova B.V., Lemeshchenko V.V., Khrustaleva I.V., Stegney J.G. Biological foundations of veterinary neonatology: a monograph. Samara: RIC SGSHA; 2015. 452 p.

Aylamazyan E.K. Obstetrics. 10th ed., revised and additional. M: GEOTAR–Media; 2019. 768 p.

Semchenko V.V., Barashkova S.A., Nozdrin V.I., Artemyev V.N. Histological technique. Omsk: Omsk Regional Printing House; 2006. 290 p.

Hernandez A. First stages of embryonic development, histogenesis of the placenta, and pregnancy maintenance. In: Bovine maternal support and embryo survival. Cham: Springer; 2024. https://doi.org/10.1007/978-3-031-62391-2_10

Wilson R.L., Davenport B.N., Jones H.N. Mid-pregnancy placental transcriptome in a model of placental insufficiency with and without novel intervention. Reproduction Science. 2025;32:435–443. https://doi.org/10.1007/s43032-024-01769-4

Hu H., Wang L., Gao J., et al. Risk factors of severe postpartum hemorrhage in pregnant women with placenta previa or low-lying placenta: a retrospective cohort study. BMC Pregnancy Childbirth. 2024;24:674. https://doi.org/10.1186/s12884-024-06876-3

Othman M.A., Husni M., El-Din W.A.N., et al. Prenatal aripiprazole induces alterations of rat placenta: a histological, immunohistochemical and ultrastructural study. Journal of Molecular Histology. 2024;55:415–426. https://doi.org/10.1007/s10735-024-10199-0

Gu M., Chen P., Zeng D., et al. Preeclampsia impedes foetal kidney development by delivering placenta-derived exosomes to glomerular endothelial cells. Cell Communication Signal. 2023;21:336. https://doi.org/10.1186/s12964-023-01286-y

Martirosyan A., Kriegova E., Savara J., et al. Impact of antiphospholipid syndrome on placenta and uterine NK cell function: insights from a mouse model. Scientific Report. 2024;14:31163. https://doi.org/10.1038/s41598-024-82451-2

Jena S.K., Das S., Chakraborty S., et al. Molecular determinants of epithelial mesenchymal transition in mouse placenta and trophoblast stem cell. Scientific Report. 2023;13:10978. https://doi.org/10.1038/s41598-023-37977-2

Chen Y., Ye Z., Lin M., et al. Deciphering the epigenetic landscape: placental development and its role in pregnancy outcomes. Stem Cell Reviews and Reports. 2024;20:996–1014. https://doi.org/10.1007/s12015-024-10699-2

Santhakumar S., Edison E.S. Molecular insights into placental iron transfer mechanisms and maternofetal regulation. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2024;309:63–77. https://doi.org/10.1007/s00404-023-07032-6

Li P., Lin Y., Ma H., et al. Epigenetic regulation in female reproduction: the impact of m6A on maternal-fetal health. Cell Death Discovery. 2025;11:43. https://doi.org/10.1038/s41420-025-02324-z

Shakhov A.G., Sashnina L.Yu., Nikonenko G.V., Vladimirova Yu.Yu., Lazutina K.V. Cellular immunity in sows in various physiological periods in a norm and in case of postpartum pathology. International Journal of Veterinary Medicine. 2022;(4):326-332. https://doi.org/10.52419/ISSN2072-2419.2022.4.326

Shabunin S.V., Shakhov A.G., Vostroilova G.A., Cheskidova L.V., Parshin P.A., Ermakova T.I., Grigorieva N.A. Porcine biferon-c applied together with medicinal prophylaxis in commercial pig breeding provides immunostimulation of sows ana an increased viability of their piglets. Agricultural Biology. 2018;53(4):851-859.

Suleimanov S.M., Parshin P.A., Slobodjanik V.S., Mozgovaya E.I. Morphometric, histochemical and ultrastructural indices of liver and duodenum in piglets with immunodeficiency. In: Veterinary and Sanitary Aspects of Quality and Safety of Agricultural Products. Proceedings of the 1st International Conference on Veterinary and Sanitary Expertise. Voronezh State Agrarian University; 2015. p. 121-123.

Agarkov A.V., Agarkov N.V., Glushchenko D.A. Studying the sows’ placental tissue re-ceptivity with different enzymativeactivities based on immunohistochemical research methods. Bulletin of KSAU. 2024;2(203):181-185. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2024-2-181-185 EDN: MBPRLF

Опубликован

31.03.2025

Выпуск

Раздел

Патология, морфология, физиология, фармакология и токсикология животных

Как цитировать

Агарков, А. В., Скрипкин , В. С., Квочко, А. Н., Агарков, Н. В., & Бондаренко , В. В. (2025). Выявление патоморфологических особенностей диэпителизированных структур плаценты свиней. Аграрный вестник Северного Кавказа, 15(1), 5-15. https://doi.org/10.31279/2949-4796-2025-15-1-5-15